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Réparation par recombinaison homologue

La recombinaison homologue (HR) répare les cassures double brin de l'ADN principalement dans S/G2, lorsqu'une chromatide sœur est disponible comme modèle. Il s'agit généralement d'une fidélité plus élevée que les voies de jonction finale, bien qu'aucun processus de réparation ne soit littéralement sans erreur. BRCA1, PALB2, BRCA2 et RAD51 agissent à différentes étapes. La perte de la fonction HR peut laisser des cicatrices génomiques et créer une vulnérabilité aux inhibiteurs de PARP, mais « BRCAness », les résultats du test HRD et le bénéfice du traitement sont des concepts liés plutôt qu'interchangeables.

Réponse rapide

La HR commence par la détection du DSB par MRN, qui recrute l'ATM et favorise la résection de l'extrémité de l'ADN 5' → 3' pour générer des surplombs d'ADN simple brin (ADNsb) en 3'. La RPA couvre l’ADNsb pour empêcher la formation de structures secondaires. BRCA1 (recruté via la cascade ubiquitine/RAP80) fait le pont vers PALB2, qui recrute BRCA2. BRCA2 déplace le RPA et charge les monomères RAD51 sur l'ADNsb, formant un filament nucléoprotéique. Le filament RAD51-ssDNA effectue une invasion de brin de la chromatide sœur duplex homologue, en l'utilisant comme modèle pour une synthèse précise de l'ADN avant résolution et ligature.

Présentation du mécanisme

La HR commence par la détection du DSB par MRN, qui recrute l'ATM et favorise la résection de l'extrémité de l'ADN 5' → 3' pour générer des surplombs d'ADN simple brin (ADNsb) en 3'. La RPA couvre l’ADNsb pour empêcher la formation de structures secondaires. BRCA1 (recruté via la cascade ubiquitine/RAP80) fait le pont vers PALB2, qui recrute BRCA2. BRCA2 déplace le RPA et charge les monomères RAD51 sur l'ADNsb, formant un filament nucléoprotéique. Le filament RAD51-ssDNA effectue une invasion de brin de la chromatide sœur duplex homologue, en l'utilisant comme modèle pour une synthèse précise de l'ADN avant résolution et ligature.

Réparation par recombinaison homologue

Rupture double brin d'ADNMRN·CtIPfin de résectionRPA · BRCA1revêtement d'ADNsbPALB2 · BRCA2Chargeur RAD51RAD51invasion de brinsRéparation dirigée par un modèleInhibiteurs de PARPolaparib · niraparib
kinase / signalisationoncogènesuppresseur de tumeursortie cellulaireinhibe

Parcours étape par étape

1
Détection DSB et fin de résection

Le complexe MRN détecte les extrémités DSB et recrute ATM. ATM phosphoryle CtIP, qui, avec la nucléase MRE11 et l'hélicase/nucléases BLM/Exo1, catalyse la résection de l'extrémité de l'ADN 5'→3', générant des surplombs d'ADNsb en 3' de centaines, voire de milliers de nucléotides.

2
Revêtement RPA et restriction du cycle cellulaire

La protéine de réplication A (RPA) recouvre les surplombs d’ADNsb en 3′, empêchant la structure secondaire et activant l’ATR kinase. La HR est limitée à la phase S/G2 par la phosphorylation de CtIP médiée par CDK1/2, garantissant que le modèle de chromatide sœur est présent avant le lancement de la HR.

3
Ensemble pont BRCA1 et PALB2

BRCA1 (recruté via la cascade d'ubiquitine RNF168 et RAP80) se lie directement à PALB2 via son domaine en spirale. PALB2 agit comme un pont moléculaire vers BRCA2, co-localisant BRCA2 avec le substrat ADNsb. Cet assemblage à trois composants (BRCA1 – PALB2 – BRCA2) constitue l'échafaudage central du complexe de réparation HR.

4
Chargement du filament RAD51 par BRCA2

BRCA2 (avec DSS1) déplace le RPA de l'ADNsb et charge les monomères RAD51 dans une réaction dépendante de l'ATP, formant un filament nucléoprotéique RAD51-ADNss hélicoïdal droitier. Ce filament a la capacité de rechercher des séquences d’ADN duplex homologues sur des distances de mégabases.

5
Invasion de brins et formation de boucles D

Le filament RAD51-ssDNA effectue une invasion de brin de la chromatide sœur intacte au niveau de la séquence homologue, formant une boucle de déplacement (boucle D). L'extrémité 3' de l'ADNsb dans la boucle D sert d'amorce pour la synthèse de l'ADN en utilisant la chromatide sœur comme modèle sans erreur.

6
Synthèse, résolution et ligature d'ADN

L'ADN Pol δ/ε étend le brin envahi en utilisant la matrice de chromatide sœur. Après capture de la deuxième extrémité (voie de réparation des cassures double brin) ou dissolution (recuit de brin dépendant de la synthèse, SDSA), les jonctions Holiday sont résolues par GEN1/MUS81-EME1 ou dissoutes par BLM-TOP3α-RMI1/2, restaurant ainsi la séquence originale avec une haute fidélité.

Pertinence pour la maladie

Les variantes germinales pathogènes de BRCA1, BRCA2 et plusieurs autres gènes de réparation peuvent créer une prédisposition héréditaire au cancer, mais les estimations du risque diffèrent selon le gène, la variante, l'âge, le sexe et les antécédents familiaux. Les tumeurs peuvent également acquérir des modifications somatiques ou un silence épigénétique qui altèrent les ressources humaines. Un résultat de cicatrice génomique décrit les modèles accumulés au cours de l’histoire de la tumeur ; il n'est pas identique à une variante BRCA, n'établit pas d'héritage et ne peut pas prouver que HR est actuellement inactif.

Implications thérapeutiques

L'inhibition de PARP peut exploiter les vulnérabilités associées à la perte de BRCA1/2 et à d'autres défauts de recombinaison homologue via l'inhibition catalytique, le piégeage de PARP et les dommages associés à la réplication. Les indications réglementaires diffèrent selon la tumeur, le biomarqueur, l'état germinal ou somatique, le traitement antérieur, le contexte d'entretien et la combinaison. Un score HRD ou une modification ATM à lui seul ne doit pas être interprété comme une preuve d’un bénéfice équivalent dans ces contextes.

Questions courantes

Quelle est la différence entre HR et NHEJ pour la réparation DSB ?

La recombinaison homologue (HR) utilise généralement une chromatide sœur comme modèle et est plus disponible dans S/G2. La jonction d'extrémités non homologues (NHEJ) ligature les extrémités de l'ADN sans matrice homologue et opère plus largement tout au long du cycle cellulaire. HR est généralement d'une fidélité plus élevée, tandis que la jonction des extrémités peut modifier la séquence au niveau de la jonction ; aucune des deux voies n’est décrite avec précision comme infaillible dans tous les contextes.

Qu'est-ce que le piégeage de la PARP et pourquoi diffère-t-il de l'inhibition catalytique de la PARP ?

L'inhibition catalytique de la PARP réduit simplement l'activité enzymatique de la PARP (consommation de NAD+). Le piégeage de PARP - le mécanisme le plus cytotoxique des inhibiteurs de PARP actuels - implique que l'inhibiteur stabilise le complexe PARP1-ADN après la détection de la coupure, empêchant la libération de PARP et créant un « obstacle » physique sur l'ADN qui est mortel lorsqu'il est rencontré par une fourche de réplication. Le talazoparib est le trappeur de PARP le plus puissant ; le niraparib et l'olaparib ont un piégeage intermédiaire ; le véliparib a un mauvais piégeage malgré l'inhibition catalytique.

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Références

  1. 1Moynahan ME, Jasin M (2010). La recombinaison homologue mitotique maintient la stabilité génomique et supprime la tumorigenèse. Nat Rev Mol Cell Biol. PubMed 20571552
  2. 2Lord CJ, Ashworth A. (2017). Inhibiteurs de PARP : létalité synthétique en clinique. Sciences. PubMed 28302823
  3. 3Roy R, Chun J, Powell SN (2012). BRCA1 et BRCA2 : des rôles différents dans une voie commune de protection du génome. Cancer Rev Nat. PubMed 22193176
  4. 4Kuchenbaecker KB, et al. (2017). Risques de cancer du sein, de l'ovaire et du sein controlatéral pour les porteurs des mutations BRCA1 et BRCA2. JAMA. PubMed 28291904